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        熒光定量 PCR 儀在科研實驗中的應用:實驗設計與操作全流程


        更新時間:2025/05/20 文章來源:新格通達 瀏覽:2485 編輯:boqinglab 搜索看看

        一、實驗目的

        本實驗旨在運用博清生物科技(南京)有限公司研發生產的熒光定量PCR儀,探究在不同藥物濃度處理下,細胞中特定基因的表達水平變化,從而分析藥物對該基因表達的調控作用,為進一步研究藥物作用機制及潛在的臨床應用提供實驗依據。

        二、實驗設計

        (一) 實驗材料

        1、細胞系:選取人源肺癌細胞系A549,該細胞系在體外培養條件下生長狀態良好,可用于研究腫瘤相關基因表達。

        2、藥物:選擇新型抗腫瘤藥物X,將其配置成0μM(對照組)、1μM、5μM、10μM四種不同濃度梯度的溶液,以探究藥物濃度與基因表達的關系。

        3、試劑:RNA提取試劑盒、反轉錄試劑盒、SYBR Green 熒光定量PCR預混試劑、無RNA酶水、引物(針對目標基因及內參基因GAPDH設計合成)。

        4、儀器:熒光定量PCR儀、高速冷凍離心機、恒溫培養箱、超凈工作臺、渦旋振蕩器、微量分光光度計。

        (二)樣本分組與處理

        將培養的A549細胞均勻分為4組,每組設置3個生物學重復。分別用不同濃度的藥物X處理細胞,對照組僅加入等量的溶劑(0.1%DMSO),在37℃、5% CO?的恒溫培養箱中孵育24小時后,收集細胞用于后續實驗。

        三、實驗操作步驟

        (一) RNA提取

        1、在超凈工作臺中,棄去細胞培養板中的培養基,用預冷的 PBS 緩沖液輕輕洗滌細胞2次,以去除殘留的培養基成分。

        2、每孔加入1ml TRIzol試劑,用槍頭反復吹打細胞,使細胞充分裂解,室溫靜置5分鐘,以確保RNA充分釋放。

        3、將裂解液轉移至1.5ml無RNA酶的離心管中,加入0.2ml氯仿,劇烈振蕩15秒,室溫靜置2 - 3分鐘,使有機相和水相充分分層。

        4、4℃、12000rpm離心15分鐘,此時離心管中會出現三層,上層無色水相含有RNA,中間層為白色蛋白層,下層為紅色有機相。小心吸取上層水相至新的離心管中,避免吸到中間層和下層液體,以防RNA污染。

        5、加入等體積的異丙醇,顛倒混勻后,室溫靜置10分鐘,使RNA沉淀。

        6、4℃、12000rpm離心10分鐘,棄去上清液,此時可見管底有白色沉淀,即為RNA。

        7、加入1ml 75%乙醇洗滌RNA沉淀,4℃、7500rpm離心5分鐘,棄去上清液,盡量吸干殘留乙醇,防止乙醇影響后續實驗。

        8、室溫晾干RNA沉淀5-10分鐘,待乙醇完全揮發后,加入適量無RNA酶水溶解RNA,用微量分光光度計測定RNA濃度和純度,確保OD???/OD???比值在1.8-2.0之間,說明RNA純度較高,可用于后續實驗。

        (二) 反轉錄

        1、按照反轉錄試劑盒說明書,在無RNA酶的離心管中配制反轉錄反應體系RNA模板2μg、隨機引物1μl、dNTP Mix 1μl、5×反轉錄緩沖液4μl、反轉錄酶1μl,用無RNA酶水補足至20μl。

        2、輕輕混勻反應體系后,短暫離心使液體集中于管底。

        3、將離心管置于PCR儀中,按照以下程序進行反轉錄反應:16℃ 15分鐘,42℃ 30分鐘,85℃ 5分鐘,反應結束后,將cDNA產物置于-20℃保存備用。

        (三) 熒光定量PCR

        1、準備反應體系:在96孔PCR反應板中,依次加入SYBR Green熒光定量PCR預混試劑10μl、上下游引物(10μM)各0.5μl、cDNA模板2μl,用無RNA酶水補足至20μl。為避免實驗誤差,每孔設置3個技術重復。

        2、用封板膜將反應板密封,輕輕振蕩混勻后,短暫離心使液體集中于孔底。

        3、將反應板放入熒光定量PCR儀中,設置反應程序:95℃預變性30秒;95℃變性5秒,60℃退火30秒,40個循環;反應結束后,進行熔解曲線分析,從60℃升溫至95℃,升溫速率為0.5℃/s,以檢測PCR產物的特異性。

        四、實驗結果分析

        (一)原始數據獲取

        熒光定量PCR儀運行結束后,導出每個樣本的Ct值(循環閾值),Ct值表示PCR反應過程中熒光信號達到設定閾值時所經歷的循環數,Ct 值與初始模板量的對數呈線性關系,Ct值越小,說明初始模板量越多。

        (二)數據分析方法

        采用2^-ΔΔCt 法進行相對定量分析。首先,計算每個樣本目標基因與內參基因GAPDH的ΔCt 值(ΔCt= Ct目標基因-CtGAPDH);然后,以對照組的ΔCt平均值作為校準值,計算其他處理組的ΔΔCt值(ΔΔCt=ΔCt處理組-ΔCt對照組平均值);最后,通過公式2^-ΔΔCt 計算各處理組目標基因相對于對照組的表達倍數變化。

        (三)結果呈現

        繪制柱狀圖展示不同藥物濃度處理組與對照組相比,目標基因表達水平的變化情況。同時,運用統計學軟件(如GraphPad Prism)進行單因素方差分析(One-way ANOVA),并進行Tukey多重比較,判斷不同處理組之間的差異是否具有統計學意義(P<0.05表示差異顯著)。

        五、實驗結論

        通過本實驗,成功運用博清生物科技(南京)有限公司研發生產的熒光定量PCR儀檢測了不同藥物濃度處理下細胞中特定基因的表達水平變化。實驗結果表明,隨著藥物X濃度的增加,目標基因的表達水平呈現出[上升/下降/先上升后下降等具體趨勢],且在[具體濃度]時,與對照組相比差異具有統計學意義。這一結果初步揭示了藥物X對該基因表達具有[促進/抑制/雙向調控等]作用,為后續深入研究藥物作用機制提供了重要的實驗數據支持。同時,本實驗的操作流程和數據分析方法也為其他類似的熒光定量PCR實驗提供了參考范例。


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